söndag 16 september 2012

Rening av plasmid och verifiering av insert


Rening av plasmid och verifiering av insert

Syftet med laborationen är att rena fram en rekombinant plasmid från en E.coli bakteriesuspension, E.coli bakterie är en bluescript plasmid, innehåller gen LL37 som kodar för en antibakteriell peptid och därefter verifieras att plasmiden verkligen innehåller LL37 som insert. Verifiering sker på två olika sätt:
1)      Genom PCR metod med primer som binder specifikt till LL37 sekvens och med gel elektrofores identifieras bandet LL37
2)      Genom att klyva ut insert (LL37) med ECOR1 restriktionsenzym och sedan med Southern blot hybridiseras med en DIG-inmärkt probe som är specifikt för LL37 och i slutet detekteras mha.  DIG antikroppar
Dag 1:
Rening av rekombinant plasmid enl. QIAgen
Koncentrations och renhetsbestämning av plasmidprep.
Laborationen startades med att rena DNA plasmid från suspension genom olika steg
Centrifugering: Togs 4,5 ml bakterie suspension en ependorfrör cetrifug/ 3min, hälldes supernatanten och sparades pelleten.
1.       Resuspension: pelleten löstes med olika bufferter
250 µl BP1innehåller Trisbuffert+ RNasvortexcentrifughälls supernatant

2.       Lysis (denatureing): tillsätts alkalisk buffert innehåller NaOH/SDS/EDTA
250 µl BP2 innehåller NaOH+ SDS, lyseras cell membranet→ej vortex (bara blandas)centrifug hälls supernatant

3.       Nutralization: tillätts KAc lösningåterbildas vetebindningar
350 µl N3 innehåller acetat buffert pH 4+ högsalt konc. nutralizationblanda direkt 4-6 ggr→suspensionen blir dimmig→ centrifug 13000 rpm/10 minhälls supernatant

4.       Clearing of lysates:
Rening på glasfiber kolonn: Hälls supernatant till QIAprep spin kolumn, alla plasmid DNA och RNA kommer att binda till kolonnen centrifug/60 sekhälls supernatant innehåller genomic DNA + proteiner och cell debris
Tvätt kolonn: med 0,5 ml PB buffert centrifug/60 sekhälls supernatant
Tvätt kolonn: med 0,75 ml PE buffert centrifug/60 sekhälls supernatant
Ytterligarecentrifug/1min tas bort resten av buffert
Placeras QIA prep kolonn i en mikrocentrifug rör
Eluering: tillsätts 50 µl EB buffert (innehåller 10mM Tris-Cl, PH 8,5)står i 1mincentrifug/ 1min plasmid DNA lossnar från kolonnett och rent plasmidDNA elueras ut

Kontroll för renhet genom koncentrationsbestämning: konc av DNA (utbytet) visar hurmycket rekombinant plasmid vi har fått och den utfördes genom att:
 späda plasmidlösningen 1:100 med TE buffert PH 8,0
mätning: med ultraviolet absorbance spectrophotomery
absorbansen är proportionellt mot koncentrationen, absorbansen valdes inom intervallet mellan 230-300 nm våglängd. absorbansen på lösningen mättes vid 260 resp. 280 nm

resultat:            A260 = 0,069 Å,                  A280 = 0,034 Å

1 absorbans enhet vid 260 nm motsvarar 50 µg DNA/ ml
1 Abs/50 µg = 0,069/ x → x = 0,069 × 50µl = 3,45 µg/ml→ = 3,45/1000 µl = 0,00345 µg/µl
Provet har spat 100 ggr = 0,00345 µg/µl ×100 ggr = 0,345 µg/µl i provet.
Kvoten A260/ A280 har räknats ut och det blir: 0,069/ 0,034 = 2,02Kvoten visar om det finns protein föroreningar
alla nukleinsyror i lösningen bidrar till absorbans, alla nukleiotider absorberar uv ljus starkt vid 260 nm ev. föroreningar av kromosomalt DNA och RNA
För ett rent DNA ska kvoten ligga mellan 1,8- 2,0
Om det finns föroreningar, absorbansen vid 280 nm blir högre och kvoten blir <1,8
frågor på resultatet:
  1. Vilka föroreningar har du förhoppningsvis tagit bort?
Förhoppningsviss att vi tagits bort alla kromosomala DNA, RNA, alla proteiner och cellrester (cell debris).
  1.  Vad vet du om resultatet? Fick du ren plasmid
enligt kvoten 2,02 visar att resultatet är bra men det är inte 100% säkert att vi har fått helt rent plasmid, det kan finnas andra proteiner eller andra nukleinsyror som har absorberats vid samma våglängd.
 Enligt tabellen nedan som visar alla värden från andra grupper att vår värde är hamnar inom intervallet och alla värden i tabellen skiljer inte så mycket.

 


  1.  Är det något du funderar på som du vill att vi t upp vid genomgång nästa labdag el. vid labuppföljningen? jag vet ej.

För att säkerställa vår renat rekombinantplasmid med LL37 sekvens utförs nästa kontroll steg som är gelelektrofores som genom detta metod kan identifieras LL37 sekvens som utförs under nästa laborationsdag.

 

 

 

 

1 kommentar:

  1. Hej,
    väldigt detaljerad beskrivning!
    Jag lägger märke på att din grupp har fått högre plasmid koncentration än min :). I min grupp så var vid 0,28 som de flesta har.

    Jag undrar bara lite över ditt värde på kvoten A260/A280.Er höga resultat beror också på A260. Det kanske kan finnas nått annat (förutom DNA) som absorberar ljus som gör att värdet är hög. Vad tror du ? // Dieu Linh

    SvaraRadera